Nos últimos anos, a doença antracnose (mancha preta, pinta preta, pinta preta), causada pelo fungo Colletotrichum coccodes, se espalhou nas principais áreas de cultivo da batata. Fabricantes e pesquisadores há muito consideram que é uma doença menor, sem importância significativa. Mas o aumento da nocividade no contexto do aumento das exigências de qualidade dos tubérculos, tanto frescos como na indústria de transformação, transferiu a antracnose para a categoria de doença economicamente importante que causa perdas económicas significativas. De acordo com publicações científicas (Kuznetsova M.A. et al., 2020), a antracnose nas batatas não era generalizada na Rússia até meados da década de 1950. Depois houve um aumento gradual da doença. Em 1980-1985, a derrota das plantas de batata pela antracnose variou de 5 a 25%, em 1986-1987 de 10 a 35%, no verão quente e seco de 1988, a derrota das copas foi de 10 a 70%, em 1989 - de 5 a 40%, em 1990-2000 - de 3 a 35%, em 2001-2009 - de 2 a 55%, no verão quente e seco de 2010 de 5 a 100%, em 2011-2019 - de 3 a 65%. Os pesquisadores concordam que as principais razões para o aumento da severidade da antracnose são a importação de sementes infectadas, espalhadas com sementes, danos aos tubérculos durante o cultivo mecanizado e uma diminuição na resistência das plantas no contexto de condições de cultivo desfavoráveis. A antracnose pode reduzir diretamente o rendimento da batata em 12-30%, piorar a qualidade do produto devido a manchas externas na casca, descoloração dos tecidos internos e levar à diminuição da comercialização da cultura durante o armazenamento.
Sintomas de antracnose. O fungo Colletotrichum coccodes pode aparecer em tubérculos, estolões, raízes, caules e folhas de batata. Na parte aérea das plantas, os primeiros sintomas da antracnose manifestam-se no amarelecimento e ressecamento das folhas. Ao mesmo tempo, os caules permanecem verdes por muito tempo (foto 1). Somente pelo amarelecimento das folhas a antracnose não é determinada. A secagem das folhas da batata pode ser causada não apenas por antracnose, esclerotinia, pectobactérias, mas também por cercosporose, alternariose e verticillium (murcha). Como resultado da manifestação conjunta de novos tipos de infecções, a secagem atipicamente precoce das plantas de batata é cada vez mais observada na produção.
Na segunda metade do ciclo vegetativo, a doença atinge os caules. Primeiro, aparecem pequenas manchas de bronze na área de fixação das folhas secas (foto 2). Depois a área afetada se expande (foto 3). No futuro, as manchas aumentam e uma camada branca de micélio aparece nelas. O tecido do caule sob o micélio muda de cor de bronze para preto (foto 4,5). A placa branca nas hastes também é causada por rizoctoniose, esclerotinia e podridão cinzenta.
Foto 2,3. Desenvolvimento de antracnose nas hastes
Foto 4,5. Flor branca de micélio de antracnose nas hastes
As manchas de antracnose também afetam a zona subterrânea dos caules. Na cor, assemelham-se à manifestação da rizoctoniose (foto 6). No entanto, na rizoctoniose, ao contrário da antracnose, a fronteira entre o tecido afetado e o saudável é muito clara.
Com o maior desenvolvimento da antracnose na parte subterrânea da planta no local dos danos aos caules, estolões, raízes, a superfície apodrece, esfolia e se separa facilmente (foto 7). Em alta umidade, o dano adquire uma tonalidade roxa clara.
Os caules danificados são facilmente arrancados do solo. Muitos microescleródios pretos se formam no local da infecção dos caules (foto 8). Daí o nome inglês da doença - ponto preto (ponto preto). Mas este também não é um sintoma excepcional: os escleródios também formam verticillium e podridão branca.
Os sintomas da antracnose nos tubérculos variam consideravelmente. Inicialmente, são manchas cinzentas desordenadas na casca. Durante o armazenamento aparece uma tonalidade prateada (foto 9). Em contraste com a crosta prateada, as manchas de antracnose são menos nitidamente separadas da casca saudável e os microescleródios são visíveis nas manchas (foto 10). Manchas pretas típicas com manchas marrons prateadas aparecem na superfície do tubérculo com saturação em todo o tecido doente de pequenos microescleródios pretos. Os tubérculos gravemente afetados murcham, a pele é facilmente removida da superfície, onde também se formam pequenos escleródios. A superfície dos tubérculos é irregular e acidentada. No corte dos tubérculos afetados, um tecido de cor marrom pode ser traçado até uma profundidade de 0.5-0.8 cm, com o tempo aparecem manchas duras e deprimidas. Com a incubação prolongada em condições de armazenamento, os sintomas da doença se espalham por todo o tubérculo, aparece tecido lacrimejante, muco e destruição completa desses tubérculos.
Foto 9. Sintomas e escleródios de antracnose em tubérculos
Com forte desenvolvimento de antracnose, observam-se manchas deprimidas, rupturas de casca, danos escuros ao anel vascular e polpa do tubérculo, que são um pouco diferentes de outras doenças dos tubérculos (phytophthora, fomose, fusarium, ditilencose), mas não inequivocamente. Os sintomas visuais nesta fase não são suficientes para identificar o patógeno (foto 11).
Fontes de infecção e fatores para o desenvolvimento da antracnose. A infecção de batatas com C. coccodes pode ser causada pelo solo, tubérculos e inóculo transportado pelo ar. O inóculo de solo, via de regra, apresenta maior nocividade em relação ao tubérculo. No solo, o fungo pode existir como escleródios ou como conídios em níveis indetectáveis. Anteriormente, acreditava-se que os escleródios sobrevivem no solo por mais de 4 anos, atualmente há reivindicações para aumentar esse período para 8 a 15 anos. O patógeno sobrevive na forma de escleródios na superfície dos tubérculos afetados, nos restos das plantas e no solo. Na primavera, os esporos se formam em restos de plantas, tubérculos e se espalham com gotas de umidade no solo e na planta. Durante o verão, os esporos germinam em umidade líquida e são capazes de infectar todas as partes da planta. A reinfecção das plantas ocorre muitas vezes por estação, os esporos são espalhados pelo vento, insetos, gotas de chuva. C. coccodes infecta frequentemente caules de batata e outros tecidos no início da estação de crescimento, mas os sintomas de clorose e necrose foliar, bem como sinais de escleródio do patógeno, muitas vezes só aparecem relativamente tarde na estação de crescimento.
Os tubérculos-semente infectados são geralmente a fonte inicial de infecção do solo e uma importante fonte de infecção para raízes, estolhos e tubérculos filhos. Qualquer parte da superfície do tubérculo pode estar infectada com C. coccodes e isso pode levar à infecção subsequente do caule. Não é possível detectar toda a infestação em um lote porque o fungo pode ocupar uma pequena parte da superfície ou estar localizado dentro do tubérculo. Sementes sem sinais visíveis de C. coccodes podem estar infectadas. O fungo da semente coloniza gradativamente o solo, afastando-se do tubérculo infectado a uma taxa de 1 mm por dia. A infecção da semente materna tem um efeito permanente na infecção da progênie, e esta infecção da semente materna começa logo após o plantio. Os tubérculos-semente com infecção externa produzem tubérculos descendentes com maior frequência e gravidade de infecção, bem como infecção do caule e número de tubérculos afetados no final do estolão. Níveis semelhantes da doença se desenvolvem em tubérculos e caules de plantas cultivadas a partir de tubérculos saudáveis, mas perto de tubérculos com sementes com infecção interna ou externa. O micélio da antracnose se move no solo dos tubérculos-semente infectados para os tubérculos filhos das plantas vizinhas. Não há correlação entre infecção superficial do tubérculo e infecção interna. No entanto, todos os tubérculos com infecções internas também apresentaram infecções externas. A infecção vascular de C. coccodes em tubérculos de sementes é particularmente preocupante porque é improvável que as infecções vasculares sejam controladas pelo tratamento de tubérculos infectados com fungicidas aplicados na superfície dos tubérculos.
Qual é a causa da derrota - sementes infectadas, solo contaminado, transmissão aérea? Isso pode ser descoberto por algumas características da lesão. A lesão transmitida pelo ar tem aparência semelhante à alternariose, mas anéis concêntricos não se formam dentro da lesão. Em regiões propensas a tempestades de poeira, existe um alto risco de infestação de folhas dessa maneira, pois as feridas de areia fornecem caminhos para a entrada do fungo. A alta frequência de infecção de tubérculos na extremidade do estolão indica que a infecção primária dos tubérculos filhos ocorreu devido à penetração do patógeno através dos estolões, ou seja, do tubérculo-mãe. Num estudo, um campo foi plantado com sementes aparentemente limpas em solo novo, mas descobriu-se que 15 a 88% dos tubérculos filhos estavam infestados.
Se o solo for a fonte principal, o desenvolvimento de microescleródios nos tubérculos ocorre aleatoriamente em toda a superfície dos tubérculos. Os sintomas da mancha preta aparecem com alta frequência no tecido radicular (60 a 90%) na data da primeira avaliação 5 semanas após o plantio, independente do nível de inóculo (baixo ou alto), mas em caules que ficam no subsolo, a doença é visível neste momento pouco ou nenhum. Um estudo semelhante sobre inóculo transmitido por tubérculos mostrou que os sintomas nas raízes e estolhos podem ser detectados na época da emergência, enquanto os sintomas nas hastes aparecem cerca de 7 a 10 semanas após a inoculação. Estudos realizados em condições de cultivo comercial no estado de Washington (EUA) mostraram que C. coccodes aparece 15 dias após a emergência em caules acima do solo e, posteriormente, 22 dias após a emergência em caules subterrâneos; no entanto, mais infecções foram geralmente isoladas de caules subterrâneos em datas de amostragem subsequentes.
Sob condições de teste de campo na Escócia, a colonização de C. coccodes no tecido radicular obtido de plantas micropropagadas livres de doenças foi semelhante àquela em raízes obtidas de tubérculos de sementes visualmente limpos e defeituosos quando avaliada no início da estação de crescimento, mas foi significativamente menor em datas de amostragem posteriores. Nos ensaios de Idaho, a colonização do tecido do caule por C. coccodes acima e abaixo do solo foi maior do que a frequência de colonização de estolões e raízes. Esta tendência continuou independentemente de a infecção ter sido devida à contaminação do solo, dos tubérculos das sementes ou da inoculação foliar. Isto contrasta com estudos anteriores que demonstraram que os sintomas da doença da mancha preta podem ser encontrados primeiro no tecido radicular em comparação com outros tecidos vegetais avaliados. Diferentes estudos avaliaram diferentes indicadores: a gravidade dos sintomas ou a colonização dos tecidos pelo fungo, que é a razão mais provável para as discrepâncias. É geralmente aceito que as infecções por C. coccodes permanecem latentes por longos períodos de tempo nos caules em comparação com as raízes e estolões.
Estudos comparando os efeitos do solo e das sementes mostraram que a infecção do solo causa mais manchas pretas do que a infecção transmitida pelas sementes. No campo na Inglaterra, níveis variados de inóculo de tubérculos de sementes resultaram em um aumento na infecção por antracnose nas bases do caule e raízes, mas não proporcional ao nível de infecção dos tubérculos de sementes, enquanto o nível de infecção do solo determina funcionalmente o nível de infecção por antracnose. O aumento da quantidade de inóculo no solo aumenta a gravidade da doença, incluindo necrose e clorose foliar, bem como o desenvolvimento de esclerose nas raízes e caules.
Saber como os campos estão contaminados com o inóculo de ponto preto ajuda a tomar decisões sobre a seleção do local, o uso de preparo fungicida ou qual variedade cultivar em um determinado campo. Para a antracnose, foi desenvolvida uma metodologia de teste precisa baseada na análise PCR do ADN e foi estabelecida a relação entre o nível de inóculo no solo e o risco de doença da batata. O procedimento de amostragem de solo para o teste de antracnose é semelhante ao teste de nematóides. O DNA alvo da antracnose é quantificado por PCR e é expresso como pg DNA/g de solo (pg é um picograma ou trilionésimo de grama). Os resultados dos testes de solo categorizam o risco como baixo (0-100 pg DNA/g solo), médio (101-1000 pg DNA/g solo) e alto (>1000 pg DNA/g solo) com base no impacto da contaminação do solo nas batatas . Se o limite for baixo, há pouco risco de níveis de antracnose causadores de doenças que possam afetar a comercialização. Se o limiar for elevado, existe um risco elevado de que a comercialização de uma proporção significativa dos tubérculos seja reduzida, a menos que sejam tomadas medidas de mitigação (Figura 13). No entanto, os padrões de desenvolvimento da antracnose em muitos estudos revelaram-se muito contraditórios, e a infecção do solo ou da semente nem sempre causa uma diminuição correspondente no rendimento e na qualidade dos tubérculos. O fato é que as consequências da infecção pela antracnose, em última análise, dependem sempre de uma combinação única de condições externas e características agrotécnicas nas condições de produção.
A temperatura ideal para o crescimento das hifas de C. coccodes é 24 оC. A formação de escleródios e subsequente infecção do tecido vegetal ocorre em uma ampla faixa de temperaturas. Não foram observados sintomas nos tubérculos aos 15 оC, mas nesta temperatura foi encontrado um grande número de hastes infectadas. A aeração e a luz também influenciam a germinação dos escleródios. Os conídios são formados em maior número nos escleródios acima do solo.
A antracnose é mais comumente associada a solos arenosos leves, altas temperaturas e má drenagem da água. Porém, a diversidade de danos nas plantas expostas ao estresse dificulta a identificação de tendências na influência de fatores abióticos e bióticos no desenvolvimento da doença. Nos EUA, a precipitação excessiva, a irrigação e as baixas temperaturas no início da estação, seguidas de uma seca prolongada, levaram à propagação da doença. Na Inglaterra, a irrigação reduziu a infecção de caules, raízes e tubérculos até 18 semanas após o plantio, mas aumentou em fases posteriores. Em Israel, onde todas as culturas são irrigadas regularmente, foram observadas doenças e perdas de culturas a altas temperaturas e solo relativamente seco.
Todas as variedades de batata são suscetíveis a C. coccodes, mas em graus variados. Estudos estrangeiros mostraram que as variedades de casca fina são mais suscetíveis à antracnose do que as variedades de casca grossa. Existem diferenças significativas entre as variedades na frequência de colonização dos caules e na gravidade dos danos à superfície dos tubérculos. Diferenças entre infecção de caule e tubérculo foram observadas em algumas cultivares, por exemplo Desiree tem a menor infecção de caule, mas uma das maiores taxas de infecção de tubérculo. A severidade da infecção é maior nas variedades precoces porque os tubérculos ficam em contato com o inóculo do solo por um período mais longo. Variações ocorrem tanto nas variedades precoces quanto nas tardias, sugerindo uma influência genética. Na Federação Russa, foram realizados estudos separados sobre a resistência das variedades de batata à antracnose. Por exemplo, o monitoramento VIZR de material de tubérculos de categorias de elite na região Noroeste mostrou que as variedades menos afetadas pela antracnose foram Gala, Lomonosovsky, Eurásia, Labadiya e Sudarynya, e as mais suscetíveis foram Nevsky, Red Scarlett, Charodey e Aluet .
A frequência de ocorrência de antracnose em tubérculos é maior com rotações de culturas de batata de um a três anos. A incidência de antracnose diminui significativamente à medida que aumenta o número de anos entre as colheitas de batata. C. coccodes é encontrada em campos sem batata durante 10 e 15 anos, mas as taxas de infecção tornam-se baixas após 6 ou mais anos sem produção de batata. Muitas espécies de plantas cultivadas e ervas daninhas são afetadas pela antracnose, são plantas hospedeiras e contribuem para a persistência a longo prazo da infecção no solo. Estudos estrangeiros mostraram que possui uma ampla gama de hospedeiros, que inclui pelo menos 58 espécies e 17 famílias, principalmente vegetais da família das beladonas - tomate, berinjela, pimentão vermelho, tabaco. Mas cenouras, cebolas, brócolis, alface, beterraba sacarina e de mesa, colza e mostarda amarela também são afetados. Trigo, milho, soja, girassol, cereais, feijão, ervilha não são suscetíveis à doença. Os produtos de decomposição liberados por algumas espécies de plantas - crucíferas, trevo doce, tremoço, híbrido sorgo-sudanês reduzem o crescimento de muitos tipos de fungos patogênicos. A sideração de culturas biofumigantes reduz a gravidade da antracnose.
Muitas ervas daninhas (beladona, trepadeira, gaze branca, bolsa de pastor, urtiga, knotweed, heliotrópio europeu, etc.) podem levar a um aumento na quantidade de inóculo ou podem servir como fonte de inóculo primário para batatas. O inóculo de C. coccodes sobrevive no solo não apenas em outras espécies hospedeiras, mas também em tubérculos de batata deixados no campo após a colheita. Eles germinam no ano seguinte e acumulam muitas doenças. Os tubérculos de batata daninhas permanecem viáveis por vários anos após a colheita inicial. Controle voluntário, ou seja, a batata voluntária é crítica para reduzir a quantidade de inóculo primário de antracnose no solo.
O estresse das plantas causado por deficiências ou desequilíbrios de nutrientes também pode aumentar a colonização por antracnose nas raízes da batata. Em experimentos controlados, o nitrogênio foi administrado em 5, 40, 160 e 640 ppm para estressar as plantas devido à deficiência e ao excesso de nitrogênio. As plantas enraizadas foram inoculadas com uma suspensão de esporos de C. coccodes. A colonização do sistema radicular foi maior no nível mais baixo de nitrogênio (5 ppm). A colonização radicular diminuiu à medida que a concentração de nitrogênio aumentou para 160 ppm, que era o nível ideal de N, e depois aumentou à medida que o nitrogênio aumentou para 640 ppm. Ao testar o potássio, a maior colonização radicular ocorreu no nível mais baixo de potássio (0 mg K) e diminuiu à medida que a concentração de potássio aumentou para 80 mg (K ideal), e depois aumentou ligeiramente à medida que a concentração de potássio aumentou para 160 mg K. O mesmo padrão observado ao testar o fósforo. A maior colonização radicular ocorreu no nível mais baixo de fósforo (0,032 ml), e depois diminuiu à medida que a concentração de fósforo aumentou até o nível ideal de P (1,00 ml). Assim, as raízes da batata são mais fortemente colonizadas pelo fungo black dot quando as plantas estão sob estresse por deficiência e excesso de nitrogênio, potássio e fósforo do que quando níveis ideais de cada nutriente estão disponíveis para as plantas.
A irrigação das batatas após a secagem das pontas aumenta a frequência e a gravidade dos danos causados pela antracnose aos tubérculos em pelo menos duas vezes. A severidade da infecção dos tubérculos e o número de tubérculos afetados na extremidade do estolão foram significativamente maiores nos tubérculos cultivados em plantas irrigadas pela parte superior em comparação com as cultivadas pela parte inferior. A água que desce pelo solo desempenha um papel significativo na movimentação do inóculo da semente do tubérculo infectado para os tubérculos filhos.
Estudos também demonstraram que a frequência e a gravidade da antracnose aumentam em tubérculos não lavados quando armazenados a 15 оC versus 5 оC e que a colheita precoce e o armazenamento dos tubérculos secos podem prevenir ou reduzir o aparecimento da doença. O desenvolvimento de manchas pretas nos tubérculos é minimizado pelo resfriamento imediato da cultura, em comparação com tubérculos mantidos a 12°C por 10 dias antes do resfriamento. Porém, é importante secar bem a colheita para evitar o desenvolvimento de apodrecimento. No armazenamento por longo prazo, não há diferença entre o aparecimento da doença em tubérculos mantidos a 2,5°C ou 3,5°C.
Opções de manejo da antracnose da batata consistem na utilização de medidas preventivas e de proteção com auxílio de fungicidas. Um dos princípios mais importantes do controle da mancha preta é reduzir a quantidade de inóculo no solo devido ao efeito da rotação de culturas, remoção de resíduos de culturas, batatas daninhas e ervas daninhas. Mesmo a rotação de culturas mais longa com culturas não hospedeiras (por exemplo, cereais, soja ou milho) não cura completamente o solo (uma vez que os microescleródios da antracnose persistem no campo até 8-15 anos), mas reduz o nível de inóculo várias vezes .
Para prevenir e reduzir a incidência desta doença, devem ser tomadas as seguintes medidas:
1. Selecção de variedades com elevada resistência à antracnose, evitando o cultivo de variedades susceptíveis em campos infectados;
2. Use sementes certificadas de fabricantes confiáveis e teste-as no campo ou na loja antes de comprar. Evite sementes infectadas de variedades mais suscetíveis. Os regulamentos para a certificação de batata-semente de todos os países não prevêem atualmente a regulamentação da antracnose, uma vez que não existe uma ligação direta entre os danos ao tubérculo uterino e o desenvolvimento de infecção nos tubérculos filhos. Estudos de PCR de amostras com sintomas de antracnose nas folhas realizados na Federação Russa mostraram que de 96 amostras, apenas 5 foram afetadas pela antracnose. Ao mesmo tempo, nos EUA e no Reino Unido, a incidência de C. coccodes em tubérculos de sementes certificados varia de 0 a 90% e 0-75%, respectivamente. As sementes importadas infectadas são o principal canal de propagação da antracnose nas regiões produtoras de batata da Federação Russa;
3. Teste as sementes para C. coccodes para determinar se é necessário tratamento com fungicida. Não plante sementes infectadas em campos limpos e livres de antracnose;
4. Evite plantar batatas em solos mal drenados;
5. A realização do preparo básico da aiveca garante a incorporação profunda dos resíduos vegetais e sua decomposição;
6. Fertilização equilibrada e suficiente;
7. Evite regar em excesso, especialmente em variedades suscetíveis e de maturação tardia. Reduzindo a quantidade de água entre a dessecação e a colheita
8. Colheita dos tubérculos o mais rápido possível após a dessecação do caule;
9. Resfriamento rápido de batatas armazenadas. Controle preciso de temperatura e umidade durante o armazenamento. Altas temperaturas e condensação na superfície do tubérculo contribuem para a doença;
10. Biofumigação do solo com adubo verde de mostarda branca, rabanete, trevo doce, híbrido sorgo-Sudanka.
Se for encontrada infecção por antracnose nos tubérculos e no solo, devem ser aplicados fungicidas especializados.
Proteção química contra antracnose. Durante muito tempo, os fungicidas com azoxisrobina foram o único meio de controlar a infecção do solo. Em numerosos testes, a azoxistrobina, aplicada por aplicação no sulco no plantio ou incorporação ao solo, mostra uma redução consistente da antracnose. Este tratamento atrasa o desenvolvimento da doença por várias semanas. Como a azoxistrobina pertence às estrobirulinas (FRAC classe 11) capazes de induzir resistência, i. resistência de patógenos nele, então este tópico é discutido ativamente, especialmente por fabricantes concorrentes de produtos fitofarmacêuticos.
Atualmente, a lista de moléculas ativas utilizadas contra a antracnose foi significativamente ampliada, uma vez que se descobriu que a infecção da batata ocorre durante todo o período de cultivo. A azoxistrobina continua a ser a referência de eficácia contra a antracnose, mas não deve ser utilizada mais do que uma vez por época. A lista mais ampla de fungicidas contra a antracnose está registrada nos EUA (Tabela 14). Várias preparações são recomendadas para introdução no sulco durante o plantio, o restante - durante o período de cultivo da batata.
Tabela 14. Lista de fungicidas para controle da antracnose da batata, EUA, 2021
Ponto preto | azoxistrobina | 6.0 – 15.5 fl oz Aframe, Equation, Quadris Flowable, Satori, Willowood Azoxy 2SC | 14 |
Não exceda uma aplicação de fungicida do Grupo 11 antes de alternar com um fungicida contendo um modo de ação diferente Quadris e Headline e guarante que os mesmos estão Fungicidas do grupo 11.
Quadris Opti é um Grupo 11 e fungicida do Grupo M. |
|
azoxistrobina + clorotalonil | 1.6pt Quadris Opti | 14 | |||
azoxistrobina + difenoconazol | 8.0 – 14.0 fl oz Quadris Top | 14 | |||
piraclostrobina | 6.0 – 9.0 fl oz Headline SC, EC | 3 | |||
azoxistrobina + benzovindiflupir | 0.34 – 0.5 onças Elatus/linha de 1,000 pés | 14 | Aplicar no sulco no plantio em uma faixa estreita sobre o pedaço da semente. Não exceda 9.5 onças/a como aplicação em faixas. | ||
clorotalonil | 1.0 - 1.5 pt Bravo Weather Stik Echo 720 1.5 - 2.25 pt Bravo Zn, Equus 500 Zn 0.875 - 1.25 lb Echo 90DF, Echo Zn 0.9 - 1.36 lb Bravo Ultrex 82.5WDG, Equus DF |
7 7 7 7
|
Observe as limitações de uso sazonal no rótulo. A rotulagem atual para uso anual de produtos de clorotalonil em Wisconsin permite produtos Bravo de 11.2 lb ai/a (Ultrex, WeatherStik, Zn) (o registro especial W! expira em 12/31/17, no entanto, uma renovação está em processo - verifique as listas de registro especial DATCP ) e produtos Echo de 16.0 lb ai/a (Zn, 720, 90DF) (o registro WI especial expira em 12/31/20). | ||
clorotalonil + cimoxanil | 2.0pt Ariston | 14 | Aplicar em intervalos de 7 a 14 dias. Use intervalos mais curtos quando as plantas estiverem crescendo rapidamente e as condições de doença forem graves. | ||
cimoxanil + famoxadona | 6.0 – 8.0 onças Tanos | 14 | Gerencia diversas outras doenças. Siga as diretrizes de gerenciamento de resistência. Para supressão. | ||
difenoconazol | 5.5 – 7.0 fl oz MP superior | 14 | Siga as diretrizes de gerenciamento de resistência. | ||
Ponto Preto (cont.) | fenamidana | 5.5 – 8.2 fl oz Razão | 14 | Gerencia diversas outras doenças. Siga as diretrizes de gerenciamento de resistência. Para supressão. | |
fluopiram + pirimetanil | 11.2 fl oz Luna Tranquility (supressão) | 7 | Comece as aplicações de fungicidas preventivamente. Não aplique mais de 43.6 fl oz/a por temporada. Não faça mais de 2 aplicações sequenciais de qualquer fungicida do Grupo 7 ou 9 antes de alternar com um fungicida de um grupo diferente. | ||
fluoxastrobina | 0.16 – 0.24 fl oz/1,000 pés de linha Aftershock, Evito 480 SC 6.1 – 9.2 oz/a Tepera | 7 | Siga as diretrizes de gerenciamento de resistência. | ||
flutolanil | 0.71 – 1.1 lb Moncut 70-DF | tratamento no plantio | Pulverize diretamente ao redor ou sobre o pedaço de semente em uma faixa de 4 a 8 polegadas antes de cobrir com terra. | ||
fluxapiroxade + piraclostrobina | 4.0 – 8.0 fl oz Priaxor | 7 | Não faça mais de 3 aplicações/a por temporada. Não aplique mais do que 24.0 fl oz/a por temporada. | ||
mancozebe | 0.4 - 1.6 qt Dithane F45 4F 0.5 - 2.0 lb Dithane M45, Penncozeb 80WP, Penncozeb 75DF 1.0 - 2.0 lb Dithane 75DF Rainshield NT, Koverall, Manzate 200 75DF |
3
3
3 |
Não exceda um total de 11.2 lb ia/a EBDC por estação de cultivo. Os materiais EBDC incluem manebe, mancozebe e metirame. | ||
mefentrifluconazol | 3.0 – 5.0 fl oz de Provysol | 7 | Não aplique mais de 5.0 fl oz (0.13 lb) / por acre por aplicação. Não faça mais do que aplicações de 5.0 fl oz ou | ||
Ponto Preto (cont.) | 5 aplicações de 3.0 fl oz por acre por ano. | ||||
metaconazol | 2.5 – 4.0 onças de anulação | 1 | Não faça mais de 4 aplicações por temporada. Não faça mais de 2 aplicações consecutivas. Não aplique mais de 16.0 onças/a por temporada. | ||
pentiopirade | 10.0 – 24.0 fl oz Vertisan | 7 | Não exceda 72.0 fl oz/a por ano. Não faça mais do que 2 aplicações sequenciais de Vertisan antes de mudar para um fungicida com modo de ação diferente. | ||
pidiflumetofeno + fludioxonil | 9.2 – 11.4 fl oz Miravis Prime | 14 | Supressão apenas de ponto preto. Não aplique mais de 2 aplicações por ano por via aérea. Não aplique mais de 34.2 fl oz por acre por ano. | ||
piraclostrobina + metirame | 2.0 – 2.9 libras Cabrio Plus | 3 | Não faça mais de 2 aplicações sequenciais antes de alternar para um fungicida que não seja do Grupo 11 ou M3. | ||
zoxamida + clorotalonil | 32.0 – 34.0 fl oz Zing | 7 | Não faça mais de 2 aplicações sequenciais antes de alternar para outro modo de ação. |
A partir de 2023, os princípios ativos pentacloroniltrobenzina, mandipropamida + difeconazol, azoxistrobina + mancozebe, mefentrifluconazol + piraclostrobina também são permitidos nos Estados Unidos. A maioria dos medicamentos listados e combinações de moléculas ativas podem ser usadas na Federação Russa contra a requeima e alternária.
A destruição radical da antracnose utilizando proteção fungicida não é alcançada. Isto é explicado pelo extenso ciclo de desenvolvimento da doença e infecção de várias fontes: através de sementes, solo e gotículas transportadas pelo ar. A diminuição do nível de desenvolvimento da doença é, no entanto, significativa - duas vezes (Tabela 15). O rendimento de batatas num contexto agrícola elevado nas melhores opções de protecção (processamento de folhas além da aplicação no solo) aumenta em 11-14 t/ha.
Tabela 15. Influência da aplicação de fungicidas no solo e foliar no desenvolvimento da antracnose, cultivar Russet Burbank, 2012
foliar SE = sulco F=foliar @20cm | Produto / ha | Visual % ponto preto - abaixe 10cm do caule | C. cocodes de DNA/g caule de batata | Rendimento MT/ha |
Quadris IF | 639 ml | 48.2/XNUMX/XNUMX de | 1798.4/XNUMX/XNUMX de | 58.68/XNUMX/XNUMX de |
Quadris IF Mancozeb F | 639 ml 2.2 kg | B 41.0 | 900.7 cd | 62.52 um |
Quadris IF Priaxor F | 639ml 426ml | 31.7 c | 622.1 d | 54.36 bc |
Priaxor SE | 480 ml | 50.0 um | 1542.6/XNUMX/XNUMX de | 54.72 bc |
Priaxor IF Bravo ZN F | 480ml 1135ml | 35.8 bc | 892.6 cd | 54.60 bc |
Priaxor IF Quadris F | 480ml 639ml | 25.6 cd | 1332.0/XNUMX/XNUMX de | 60.00/XNUMX/XNUMX de |
Priaxor IF Título F | 480ml 426ml | 28.3 cd | 789.0 cd | 65.76 um |
Quadris IF Fontelis F | 639 ml 1.1 kg | 22.7 d | 595.1 d | 56.04 bc |
Vertisan IF Quadris F | 1646ml 639 | 35.5 | 2249 um | 57.36 bc |
Não tratado | 51.5 um | 2072.9 um | 51.96 c |
Os dados obtidos (ver tabela 15) mostram claramente que uma aplicação no solo durante o plantio de fungicidas de estrobirulina não é suficiente para controlar esta doença. No Canadá, essa opção é até considerada desarrazoada: recomenda-se que fungicidas antracnose à base de azoxistrobina, difeconazol, mefentrfluconazol, benzovindiflupir e fluopiram + pirimetanil sejam aplicados apenas durante o período de cultivo. Na verdade, a eficácia contra a antracnose deve ser tida em conta na formação de um sistema de protecção da batata contra as principais doenças (alternária, requeima) durante o período vegetativo. Foi também estabelecido que a introdução da azoxistrobina no final do período vegetativo , uma semana após a dessecação, proporciona um efeito adicional significativo de redução dos danos aos tubérculos.
A protecção do material de plantação contra a antracnose é actualmente reconhecida como ineficaz, embora muitas substâncias activas (difeconazol, piraclostrobina, imidazol) destruam quase completamente o inóculo na superfície dos tubérculos (diagrama 16). Mas esse é um efeito de curto prazo, suas consequências se nivelam rapidamente, em um mês, porque a infecção também está dentro dos tubérculos.
Finalmente. A nocividade da antracnose aumentou significativamente recentemente, este patógeno passou para a categoria de problemas economicamente significativos. O fungo Colletotrichum coccodes, que causa antracnose em batatas, é um patógeno difícil de prever e indescritível. A infecção inicial é latente. A infecção de raízes, estolões e caules subterrâneos e acima do solo começa relativamente cedo na estação de crescimento, mas sintomas ou sinais evidentes do patógeno (microescleródios) podem não aparecer nas plantas até a época da colheita. Os tubérculos ficam infectados no campo, mas podem não apresentar sintomas óbvios até meados do período de armazenamento. A doença não se espalha de tubérculo para tubérculo durante o armazenamento a longo prazo, mas infecções latentes começam a aparecer durante o armazenamento e os danos aos tubérculos aumentam. Os sintomas da antracnose muitas vezes não são claros, inequívocos e coincidem com murcha por Alternaria, verticillium, envelhecimento natural, deficiência de nitrogênio, etc. O impacto da doença no rendimento da batata não pode ser previsto, uma vez que muitas condições e factores, tanto bióticos como abióticos, afectam a nocividade do agente patogénico.
A antracnose é difícil de controlar. O inóculo sobrevive no solo durante muitos anos, espalha-se com o material de plantação e com a chuva, e a infecção continua durante toda a estação de crescimento. A rotação de culturas mais longa não limpa o solo, e a alternância de batatas com culturas como cenoura, beterraba, cebola, mostarda amarela e colza (para sementes) leva ao acúmulo de infecção. A minimização dos danos causados pela antracnose é possível com base na plena utilização de medidas organizacionais e tecnológicas e no uso qualificado e anti-resistente da azoxistrobina e de uma série de outras substâncias ativas de fungicidas. Deve ser dada especial atenção ao nível de infecção das sementes e do solo. É importante fertilizar e regar as batatas de forma completa e equilibrada, colher e armazenar os produtos de maneira adequada e em tempo hábil, suprimir eficazmente as ervas daninhas, incluindo as batatas daninhas, e usar o efeito fumigante do adubo verde. Fungicidas eficazes devem ser alternados e aplicados no plantio no solo, na primeira metade do ciclo vegetativo e antes da colheita. O método químico de controlo da antracnose deve ser uma parte obrigatória de um sistema moderno de protecção da batata.
Autor do material: Sergey Banadysev, Doutor em Ciências Agrárias. Ciências, "Tecnologias Doka-Gene"